北方伟业计量集团有限公司
结果
2.1D-缬氨酸细胞毒性实验本实验采用CCK-8法通过评估不同浓度D-缬氨酸对L929细胞增殖的影响,以研究D-缬氨酸对L929细胞的细胞毒性。结果如图1:培养第1、3、 5天与对照组相比,D-缬氨酸在浓度为50mmol/L和75mmol/L时对L929细胞增殖的影响无显著性差异(P>0.05);D-缬氨酸在浓度为100mmol/L,125mmol/L和150mmol/L时对L929细胞增殖的影响具有显著性差异(P<0.05)。浓度为50mmol/L和75mmol/L和D-缬氨酸被用于进一步研究。
2.2D-缬氨酸和L-缬氨酸对牙龈卟啉单胞菌活性的影响
本实验通过测定不同浓度的D-缬氨酸和L-缬氨酸与牙龈卟啉单胞菌共培养后的生长曲线,评估D-缬氨酸和L-缬氨酸对牙龈卟啉单胞菌生长的影响。结果如图2:空白对照组在培养72h后浊度达到峰值,并持续12h后浊度开始下降,在96~144h内浊度保持。与对照组相比:加入L-缬氨酸组(50mmol/L,75mmol/L),生长曲线峰值在培养60h后出现,随即浊度开始下降,在96~144h内浊度保持与对照组无差异;加入50mmol/LD-缬氨酸组,生长曲线在60h前细菌浊度未见明显增长,60h后开始增加,并在108~144h保持,持续浊度与对照组无差异;加入75mmol/LD-缬氨酸组,细菌浊度在培养144h内无增长。加入D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组实验结果等同于仅加入D-缬氨酸组。
2.3生物膜形成
实验结晶紫染色分析结果如图3,生物膜形成抑制实验:共培养3d后,D-缬氨酸组(50mmol/L,75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(50mmol/L,75mmol/L)与对照组相比具有显著性差异(P<0.05)。L-缬氨酸(50mmol/L,75mmol/L)与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。共培养5d后,D-缬氨酸组(75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(75mmol/L)与对照组相比具有显著性差异(P<0.05);其他组与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。生物膜分散实验:D-缬氨酸组(75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(75mmol/L)与对照组相比具有显著性差异(P<0.05);其他组与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。
2.4D-缬氨酸和L-缬氨酸对牙龈卟啉单胞菌胞外多糖的影响
标准曲线如图4a,胞外多糖分析结果如图4b。生物膜形成抑制实验:共培养3d后,D-缬氨酸组(50mmol/L,75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(50mmol/L,75mmol/L)与对照组相比胞外多糖含量明显较少,并具有显著性差异(P<0.05)。L-缬氨酸(50mmol/L,75mmol/L)与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。共培养5d后,D-缬氨酸组(75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(75mmol/L)与对照组相比胞外多糖量明显低于对照组,并具有显著性差异(P<0.05);其他组与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。生物膜分散实验:D-缬氨酸组(75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(75mmol/L)胞外多糖量显著低于对照组(P<0.05);其他组与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。
2.5扫描电镜观察牙龈卟啉单胞菌生物膜不同浓度D-缬氨酸和L-缬氨酸对牙龈生物膜影响
电镜图如图5、6、7所示。生物膜形成抑制实验:对照组培养第3天和第5天菌层厚度均大于4层,且细菌间相互附着,连接紧密。与对照组相比,培养3d后D-缬氨酸组(50mmol/L,75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(50mmol/L,75mmol/L)生物膜细菌层数少于1层,细菌间无紧密连接。孵育5d后D-缬氨酸组(75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(75mmol/L)牙龈生物膜细菌层数少于1层,细菌间无紧密连接。D-缬氨酸组(50mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(50mmol/L)牙龈生物膜细菌组细菌层数大于3层,再次形成紧密连接膜状结构。3d和5d时,L-缬氨酸组(50mmol/L,75mmol/L)牙龈卟啉单胞菌菌层数均大于对照组,细菌间附着良好,紧密连接。分散试验结果表明,D-缬氨酸组(75mmol/L),D-缬氨酸与L-缬氨酸混合组(75mmol/L)细菌层数均小于2层,无完整生物膜结构,其他实验组菌群层数仍大于4层。
声明:本文所用图片、文字来源《口腔医学研究》2020年7月第36卷第7期,版权归原作者所有。如涉及作品内容、版权等问题,请与本网联系
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